肝细胞肝癌中CyclinA1的表达及意义

时间:2023-10-06 17:32:21 来源:网友投稿

马晏然,杨茜,李宏,宋京芝,周璇,项锋钢,

(青岛大学,山东 青岛 266071 1 基础医学院病理学系;

2 附属医院病理科)

肝细胞肝癌(HCC)是发展中国家最常见的原发性肝癌类型,主要由病毒感染引起[1]。在我国,其病死率仅次于胃癌[2]。根治性切除术是HCC的主要治疗方式,但HCC病人术后有较高的复发转移率,预后不理想[3-4]。表观遗传修饰的调节及不同信号转导通路的交叉作用导致HCC发生发展的机制极其复杂[5-7]。因此,探讨HCC发生发展的分子机制,寻找影响其发生、发展及判断其预后的分子标志物将具有重要意义。细胞周期蛋白A1(CyclinA1)参与细胞周期循环的调控,在维持细胞有序的增殖和分裂活动中起作用[8]。研究表明,CyclinA1在多种恶性肿瘤中异常表达,并提示预后不良[9-10]。但是CyclinA1影响HCC发生发展的研究相对较少。有研究显示,CyclinA1在HCC组织中异常表达,通过抑制细胞凋亡,有利于肿瘤形成[11]。本研究通过检测CyclinA1在HCC中的表达,探讨CyclinA1与HCC病人临床病理特征及预后的关系,为HCC的临床治疗提供新的靶点。

1.1 实验材料

1.1.1标本收集 收集青岛大学附属医院2014—2016年手术切除的HCC石蜡包埋标本284对,包括HCC及其相应癌旁非瘤组织(距肿瘤边缘>5 cm),病人男244例,女40例;
年龄32~83岁,平均(57.4±9.7)岁;
病人临床病理资料均完整,术前均未接受放、化疗。HCC病人通过电话与住院复查结合的方式随访,随访截止日期为2021年7月31日,共有251例随访满5年且资料完整,分析其术后生存时间。选取2020年12月—2021年1月手术切除、立即冻存于液氮中的9对新鲜HCC及相应癌旁非瘤组织(距肿瘤边缘>5 cm)。本研究经青岛大学附属医院伦理委员会批准。

1.1.2主要试剂 CyclinA1鼠抗人单克隆抗体购自美国安迪科技公司,免疫组织化学工作浓度1∶100,Western blot工作浓度1∶1 000;
Trizol裂解液、RIPA裂解液、PV6000免疫组织化学检测试剂盒、BCA蛋白检测试剂盒、PAGE凝胶快速制备试剂盒、ECL发光液均购自北京索莱宝科技有限公司;
PrimeScriptTM逆转录试剂盒购自大连宝生物工程有限公司;
SYBR PremixEx TaqTMⅡ荧光定量试剂盒购自北京全式金生物技术有限公司。

1.2 实验方法

1.2.1实时荧光定量PCR(qRT-PCR)方法检测CyclinA1 mRNA的表达 应用TRizol裂解液提取新鲜组织标本总RNA,应用PrimeScriptTM试剂盒反转录,按试剂盒说明书操作。qRT-PCR反应条件[12]:95 ℃预变性30 s;
95 ℃变性5 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共进行40个循环。HCC及相应癌旁非瘤组织中CyclinA1 mRNA的相对表达量计算使用2- △△Ct方法[12]。以GAPDHmRNA表达量作为标准化内参。PCR引物及其序列见表1。

表1 PCR引物及其序列

1.2.2Western blot方法检测CyclinA1蛋白的表达 应用RIPA裂解液提取新鲜HCC及相应癌旁非瘤组织总蛋白。按BCA检测试剂盒说明书操作,检测蛋白浓度。配制体积分数为0.10的PAGE凝胶,每孔加入30 μg蛋白;
80 V电泳,300 mA电转,各持续1.5 h,快速封闭液封闭10 min,TBST洗膜3次;
室温孵育目标一抗2 h,TBST洗膜3次; 室温孵育二抗1.5 h;
TBST洗膜3次后,使用ECL发光液在暗室中显影。条带灰度值经Image J软件分析后,计算蛋白表达量。

1.2.3组织芯片的制作 石蜡包埋组织切片,苏木精-伊红(HE)染色,由两位经验丰富的病理医师显微镜下观察,标记肿瘤及癌旁非瘤组织的典型区域。应用全自动组织芯片点样仪MiniCore3制作孔径1.5 mm的组织芯片,4 μm切片后复检,用于免疫组织化学染色。

1.2.4免疫组织化学染色方法检测CyclinA1的表达 采用PV 6000法进行免疫组织化学染色:组织切片经二甲苯脱蜡、梯度乙醇水化后,浸泡于体积分数0.03的H2O2灭活内源性酶;
水洗后,微波加热修复(EDTA,pH值8),自然冷却,PBS冲洗3次,滴加一抗,37 ℃孵育2 h;
PBS冲洗3次,滴加二抗,37 ℃孵育30 min;
PBS冲洗3次,DAB显色,苏木精复染,中性树胶封片,显微镜下观察[12]。以PBS代替一抗作为阴性对照,以已知阳性表达CyclinA1的结肠癌组织作为阳性对照。结果判定[13-14]:以细胞核染色呈棕黄色或棕褐色计为CyclinA1阳性表达。首先对阳性细胞染色强度评分:0分,无着色(-);
1分,棕黄色(+);

2分,棕褐色()。再对阳性细胞所占百分比评分:< 10%为0分,10%~50%为1分,≥50%为2分。两者得分相加,≤ 2分为低表达,> 2分为高表达。

1.3 统计学处理

2.1 HCC及其癌旁非瘤组织中CyclinA1 mRNA和蛋白表达比较

本研究9对新鲜HCC及相应癌旁非瘤组织中CyclinA1 mRNA的表达水平分别为-4.782±1.505和-6.714±1.502,差异具有统计学意义(t=4.739,P<0.01);
CyclinA1蛋白表达水平分别为2.756±0.134和0.904±0.057,差异有统计学意义(t=12.690,P<0.01)。见图1。

T:HCC组织;
N:相应癌旁非瘤组织。图1 HCC及相应癌旁非瘤组织中CyclinA1表达的Western blot检测

2.2 HCC及相应癌旁非瘤组织中CyclinA1表达比较

IHC染色显示,CyclinA1主要在细胞核中阳性表达(图2)。HCC组织中CyclinA1高表达146例(51.41%),而相应癌旁非瘤组织中无高表达,两组比较差异有统计学意义(z=-16.019,P<0.01)。

A:CyclinA1在HCC组织中呈高表达;
B:CyclinA1在癌旁非瘤石蜡包埋组织中呈低表达;
C:CyclinA1在癌旁非瘤石蜡包埋组织中呈阴性表达。IHC染色,400倍。图2 CyclinA1在组织芯片中的表达

2.3 CyclinA1表达与HCC病人临床病理特征的关系

CyclinA1的表达与HCC病人肿瘤的分化程度、TNM分期、肿瘤是否多发、脉管侵犯、被膜侵犯和肿瘤大小均有关(χ2=4.559~15.551,P<0.05),而与病人性别、年龄、合并肝硬化、携带乙型肝炎表面抗原、甲胎蛋白无关(χ2=0.008~2.255,P>0.05)。见表2。

表2 CyclinA1表达与HCC病人临床病理特征的关系(例(χ/%))

2.4 CyclinA1表达与HCC病人术后生存期关系

Kaplan-Meier分析表明,CyclinA1低表达病人的平均总生存时间(OS)和无病生存时间(DFS)分别为53.7个月和51.7个月,而高表达病人分别为45.9个月和43.2个月,差异有显著性(χ2=15.060、12.930,P<0.05)。CyclinA1阳性表达的HCC病人中,CyclinA1低表达者的平均OS和DFS分别为59.4个月和59.2个月,而高表达者分别为45.7个月和42.3个月,差异有显著性(χ2=23.150、20.610,P<0.001)。分化程度差的病人中,CyclinA1低表达病人的平均OS和DFS分别为50.1个月和46.8个月,而高表达病人分别为38.4个月和35.3个月,差异有显著性(χ2=6.921、5.116,P<0.05)。肿瘤多发的HCC病人中,CyclinA1低表达者的平均OS和DFS分别为46.1个月和41.9个月,而高表达者分别为27.8个月和22.6个月,差异有显著性(χ2=7.875、6.876,P<0.01)。脉管侵犯的HCC病人中,CyclinA1低表达者的平均OS和DFS分为51.1个月和48.2个月,而高表达者分别为38.4个月和35.4个月,差异有显著性(χ2=10.970、8.904,P<0.01)。被膜侵犯的HCC病人中,CyclinA1低表达病人的平均OS和DFS分别为52.7个月和49.6个月,而高表达的病人分别为41.3个月和38.0个月,差异有显著性(χ2=11.420、8.233,P<0.01)。肿瘤直径≥5 cm的HCC病人中,CyclinA1低表达者的平均OS和DFS分别为50.1个月和47.6个月,而高表达的病人分别为39.5个月和35.3个月,差异有显著性(χ2=4.991、4.203,P<0.05)。见图3、4。

A、B:CyclinA1表达与HCC病人OS及DFS的关系;
C、D:CyclinA1阳性表达HCC病人表达水平与OS及DFS的关系;
E、F:分化程度差的HCC病人CyclinA1的表达与OS及DFS的关系;
G、H:肿瘤多发的HCC病人CyclinA1表达与OS及DFS的关系;
I、J:有脉管侵犯的HCC病人CyclinA1表达与OS及DFS的关系;
K、L:有被膜侵犯的HCC病人CyclinA1表达与OS及DFS的关系。图3 CyclinA1表达与HCC病人术后生存期的Kaplan-Meier分析

图4 肿瘤≥5 cm的HCC病人CyclinA1表达与OS及DFS的关系

2.5 Cox回归模型分析影响HCC病人的术后生存时间的因素

单因素分析显示,CyclinA1的表达水平(β=1.062,HR(95%CI)=2.892(1.569~5.339),P<0.001)以及分化程度、TNM分期、肿瘤是否多发、脉管侵犯、肿瘤大小、甲胎蛋白均是影响病人术后OS的因素(β=-1.132~-0.511,HR(95%CI)=0.322(0.194~0.536)~0.600(0.352~1.022),P<0.05);
CyclinA1的表达水平(β=0.986,HR(95%CI)=2.682(1.455~4.944),P<0.001)及分化程度、TNM分期、肿瘤是否多发、脉管侵犯、被膜侵犯、肿瘤大小、甲胎蛋白(β=-1.144~-0.563,HR(95%CI)=0.318(0.191~0.530)~0.569(0.334~0.970),P<0.05)是术后DFS的影响因素。将单因素分析中具有统计学意义的临床病理参数进行多因素分析,结果显示,CyclinA1表达、分化程度、肿瘤是否多发、肿瘤大小既是影响术后OS的独立预后因素(β=-1.227~1.397,HR(95%CI)=0.293(0.171~0.503)~3.706(2.045~6.717),P<0.05),也是影响术后DFS的独立预后因素(β=-1.379~1.453,HR(95%CI)=0.252(0.145~0.436)~4.274(2.188~8.350),P<0.05)。见表3~4。

表3 影响HCC病人OS的单因素及多因素Cox回归模型分析

表4 影响HCC病人DFS的单因素及多因素Cox回归模型分析

CyclinA1的编码基因位于染色体13q12.3-13上,蛋白质主要定位在细胞核内[15]。在细胞周期循环中,CyclinA1蛋白与细胞周期蛋白依赖性蛋白激酶2(CDK2)形成复合物,促进G1/S转换、启动DNA合成[16-17]。此外,CyclinA1可以与视网膜母细胞瘤蛋白(pRb)和p21蛋白结合形成活性复合物,调节多种促生长基因的表达[8,15,18]。

研究表明,在多种恶性肿瘤包括前列腺癌、食管癌、精原细胞癌、乳癌等组织中,CyclinA1的表达升高[9-10,19-24]。然而,CyclinA1在HCC中表达研究少见报道,CHEN等[11]研究发现,HCC组织中的CyclinA1表达明显高于相应癌旁非瘤组织。本文检测HCC石蜡配对组织和新鲜HCC组织CyclinA1 mRNA和蛋白表达,结果显示肿瘤组织中CyclinA1 mRNA和蛋白表达水平明显升高,表明CyclinA1可能参与HCC的发生过程。

近年来的研究表明,CyclinA1的表达与肿瘤大小相关,且肿瘤高Ki-67指数组中CyclinA1的表达水平高于低Ki67指数组[25]。YANG等[26]研究发现,在人肺成纤维细胞中,突变型P53蛋白通过下调CyclinA1抑制因子p21表达,导致CyclinA1的表达升高,细胞增殖能力增强。提示CyclinA1可增强肿瘤细胞增殖活性。有研究认为,CyclinA1在恶性肿瘤增殖中发挥了重要作用[21]。本文研究结果显示,除肿瘤大小外,与HCC组织中CyclinA1表达有关的还有肿瘤分化程度、TNM分期、脉管侵犯、被膜侵犯和肿瘤是否多发,肿瘤分化程度差、TNM分期晚、有脉管侵犯、被膜侵犯及增殖能力强的病人CyclinA1的表达水平更高,说明CyclinA1高表达可增强HCC的增殖活性,且更利于HCC浸润转移,CyclinA1可能与HCC的发展密切相关。有研究表明,在pRb的参与下,CyclinA1通过直接绑定基质金属蛋白酶2(MMP2)和血管内皮生长因子(VEGF)的启动子区域,增加MMP2蛋白的转录,促进VEGF分泌,使癌细胞更易发生浸润、转移[20]。这可能是CyclinA1促进HCC细胞侵袭转移的原因之一。然而,目前关于CyclinA1影响HCC侵袭转移的具体分子机制仍不明确,有待今后的研究进一步探讨。

此外,CyclinA1的表达与多种肿瘤病人的预后关系密切,CyclinA1高表达肿瘤病人的术后OS及DFS较低表达者更短,CyclinA1的表达水平是影响肿瘤病人术后OS及DFS的独立预后因素[24]。本研究结果表明,高表达CyclinA1的HCC病人术后OS及DFS较低表达者更短;
在CyclinA1阳性表达、被膜侵犯、脉管侵犯、肿瘤多发、分化程度差和肿瘤直径≥5 cm的HCC病人中,CyclinA1高表达组的术后OS及DFS均较低表达组更短。有研究显示,CyclinA1的表达水平与肿瘤细胞化疗药物耐药性呈正相关,CyclinA1过表达显著降低化疗药物诱导的肿瘤细胞凋亡。这或许是导致HCC病人术后预后较差的诸多原因之一。本文Cox回归模型分析显示,CyclinA1表达及肿瘤多发性、分化程度、肿瘤大小是影响HCC病人术后OS及DFS的独立预后因素;
CyclinA1高表达与病人预后不良有关,提示CyclinA1可能作为一种常规检测指标用于评估HCC病人术后生存期。

本研究存在一定的局限性:284例HCC病人术后生存时间满5年251例,应完善随访资料并分析,以进一步证实上述实验结果;
未使用细胞实验以及裸鼠实验等探究CyclinA1在HCC发生发展中确切分子机制;
此外,虽有研究证明CyclinA1影响HCC细胞凋亡,但相应的调控机制仍不明确,这都是值得未来深入探讨及研究的方向。

综上所述,CyclinA1可能参与了HCC发生发展的过程,CyclinA1高表达的病人术后预后不良,CyclinA1表达对HCC病人预后的判断具有较大指导意义。今后的研究中,可采用细胞学实验与动物实验深入探讨CyclinA1影响HCC发生发展的确切分子作用机制,以指导临床药物分子靶向治疗、病人预后的判断。

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